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Location:

Altensteinstr. 23a (SupraFAB), lab 026.2 (OM S2 area)Booking:

SN:3967000224

FUB:

Responsible persons & booking: https://fub.openiris.io/timeline/ba8e4fb9-4cf9-43c7-8a4e-ad5b96d41a57

Detailed information and protocols how to use OpenIris you find here.


Requirements e.g. device specific training & safety briefing:

  1. Register as new user via the SupraFAB Homepage participate in person in the SupraFAB safety briefing (see SupraFAB Homepage); & become familiar with the safety guidelins, instructions and rules & biolab agreement.

  2. Fill the transponder form with work safety questionaire(2. page), let it sign by your research group head and the respective responsible persons in supraFAB and finally hand in to Katharina Tebel (office 103) or Achim Wiedekind (office 102). 

  3. Make an appointment with your Keyuser*, to get practical training (2-3 session) & an intro to the OM, the BioSupraMol, data handling (network) as well as the SupraFAB House guidelines.
    In case you are the first person of your group who wants to use the device or in case of fuurtehher questions, contact the responsible person shown in OpenIris (https://fub.openiris.io/timeline/ba8e4fb9-4cf9-43c7-8a4e-ad5b96d41a57).
  4. Follow the addtional info for full accesss on the Access to the Optical Microscopy (OM) Facility page.
  5. Book the device using OpenIRIS (protocls see here).

Note: Scientific guests as well as non-scientific staff such as service personal from companies also need to get introduced by one of the PIs for genetic engeeneering (see Biolab Team & Lab Phone Numbers). The introducution and documentation forms and slides can be found on the safety intro page (https://wikis.fu-berlin.de/x/pQhVT). The documentation forms and permission forms need to be stored in the repsective folder in office 111.


Zeiss Axio Zoom.V16 Stereo Microscope

The Axio Zoom.V16 fluorescence stereomicroscope has a 16x zoom and a high numerical aperture of NA 0.25, making it suitable for viewing large samples and whole model organisms in fluorescence contrast and reflected light.

Suitable for

  • Large samples and whole model organisms

  • Fluorescently stained and unstained samples

Microscope Stand

Stand orientation: Inverted

Condenser: LD-Kondensor 0,55 H, Ph1, Ph2, Ph3, DIC, DIC; 6-fach mot. mit motorisch bedienbarer Aperturblende und Revolverscheibe, a=26mm Für Objektivvergrößerungen 4,0x-100x

Microscope Details

Objectives: Objektiv Plan

-Apochromat 10x/0,45 M27 (a=2,1mm)
  • Objektiv LD LCI Plan-Apochromat 25x/0,8 Imm Korr DIC M27 für Wasser-, Silikonöl-, Glyzerin- oder Öl-Immersion (D=0-0,17mm) (a=0,57mm bei D=0,17mm)
  • Objektiv alpha Plan-Apochromat 100x/1,46 Oil DIC M27 (a=0,10mm), (UV)VIS-IR, inkl. Immersol 518 F, Öler 20ml und Deckgläser, hoch präzise, D=0,17mm
  • Objektiv EC Plan-Neofluar 40x/1,30 Oil DIC M27 (a=0,21mm)
  • Objektiv LD LCI Plan-Apochromat 40x/1,2 Imm autocorr DIC M27 für Wasser-, Silikonöl- oder Glyzerin-Immersion (D=0-0,17mm) (a=0,40mm bei D=0,17mm)
  • Objektiv C-Apochromat 63x/1,2 W autocorr M27 (D=0,14-0,19mm) (a=0,28mm bei D=0,17mm), UV-VIS-IR
  • Objektiv C Plan-Apochromat 63x/1,4 Oil DIC M27 (a=0,14mm), UV-VIS-IR

    • Z 1,0x/0,25 FWD 60mm mit Auflösung von 100 ... 740 LP/mm oder kleinstem Detail 5,0 ... 0,7 μm; Abgleichlänge 164mm, Frontgewinde M62x0,75

    Illumination:

    • Fluorescence: Beleuchtungseinrichtung HXP 200C
    • Brightfield: LED-Doppelspot

    XY stage: Table control XY with joystick, Scanning stage with travel range 130 mm x 100 mm, stage surface 325 mm x 144 mm ,max. speed 50 mm/sec, resolution: 0.1 µm, reproducibility: +/- 1 µm, absolute accuracy: +/- 5 µm, Z-PIEZO

    Z focus device: motorized Z-drive (max.step size 10 nm) and synchronized image acquisition

    Illumination (for preview by eye pieces):

    • Transmitted light illumination by means of LED
    • Incident light illumination using 7-channel LED illumination (solid-state co-light source) to excite Cy7, Cy5, Alexa 631, TOTO-3, mCherry, Alexa 568, mPlum, Cy3, TRITC, DsRed, eGFP, Fluo4, FITC, eCFP, Lucifer Yellow, Alexa 430, DAPI, Alexa 405, Hoechst 33258 and similar dyes.

    Fluorescent filter cubes (for preview by eye pieces)::

    • Filterset 38 Endow GFP shift free (E) EX BP 470/40, BS FT 495, EM BP 525/50
    • Filterset 43 Cy 345 HQ TexasRed, d=25 shift free (E) EX BP 545560/2540, BS FT 570585, EM BP 605/70
    • Filterset 49 DAPI shift free (E) EX G 365, BS FT 395, EM BP 445/50

    Lasers (illumination):

    • Dioden Laser 405nm CW/PS (pulsed) - 980 Umschaltbar zwischen CW und gepulstem Betrieb. Frequenzen 20, 50 und 80 MHz Leistung am Faserausgang 15 mW
    • Diodenlaser 445 nm für Laser/Elektronik Rack mit 561 nm Laser (D) 7,5 mW am Faserausgang
    • Dioden Laser 514 nm (D) 10 mW am Faserausgang
    • DPSS Laser 594 nm (D) 2,5 mW am Faserausgang

    Detection:

  • Airyscan 2, Spektral Detektor 32 Kanäle GaAsP PMT plus 2 Kanäle MA-PMT, Counting Elektronik für 4 Kanal und 32 Kanal Quasar Hardware Voraussetzung am 4 und 32ch Spektraldetektor LSM 980 für Bildaufnahme im Photonenzählmodus
    • Emissionsfilter BP 420-480 + BP 495-550 Airyscan
    • Emissionsfilter BP 495-550 + LP 570 Airyscan
    • Emissionsfilter BP 570-620 + LP 655 Airyscan
    • Emissionsfilter BP 420-480 + BP 495-620 Airyscan
    • Emissionsfilter BP 420-480 + LP 605 Airyscan
    • Emissionsfilter BP 465-505 + LP 525 Airyscan
    • 630/75

    Detection: Mikroskopie-Kamera Axiocam 305 mono

    Durchlichtdetektor T-PMT für LSM 980

    Software: ZEN 3.6 mit ZEN Modul Measurement - ZEN Modul Multi Channel - ZEN Modul Panorama - ZEN Modul Manual Extended Focus - ZEN Modul Image Analysis - ZEN Modul Time Lapse - ZEN Modul Z Stack - ZEN Modul Extended Focus - ZEN Modul Autofocus - ZEN Modul Colocalisation - ZEN Modul Spectral Unmixing (nur LSM) - ZEN Modul Counting - ZEN Modul LSM Plus - ZEN Modul Airyscan 2 Multiplex Plus

    More information

    Incubation: Incubator with temperature control 20-45°C (temperature accuracy: +/- 0.1°C) and CO2 module for 5%CO2

    FLIM:

  • Laserkopf für Pikosekunden-Pulse - 557 ± 3 nm, spektrale Breite <1 nm, ca. 3 mW bei 80 MHz - Ausgang Freistrahl
  • Bandpassfilter zur Fluoreszenzdetektion - transmittiert von 576 nm bis 623 nm - blockt von 300 nm bis 569 nm und von 632 nm bis 734 nm - geeignet z.B. für mCherry, Atto565
  • LDH-D-C-510 Laserkopf für Pikosekunden Pulse und cw Betrieb - 510 ± 10 nm - inkl. Kollimator und Temperaturstabilisierung - cw nur mit PDL 828 oder PDL 800-D möglich
  • Filtersatz für 510 nm Anregung, bestehend aus: - 1 Laserlinien Filter (25 mm Rundfilter) - 1 Fluoreszenz Bandpass Filter (25 mm Rundfilter)
  • LDH-D-C-485 Laserkopf für Pikosekunden Pulse und cw Betrieb - 485 ± 10 nm - inkl. Kollimator und Temperaturstabilisierung - cw nur mit PDL 828 oder PDL 800-D möglich
  • Filtersatz für 485 nm Anregung, bestehend aus: - 1 Laserlinien Filter (25 mm Rundfilter) - 1 Fluoreszenz Bandpass Filter (25 mm Rundfilter)
  • LDH-D-C-440 Laserkopf für Pikosekunden Pulse und cw Betrieb - 440 ± 10 nm - inkl. Kollimator und Temperaturstabilisierung - cw nur mit PDL 828 oder PDL 800-D möglich
    • Filtersatz für 440 nm Anregung, bestehend aus: - 1 Laserlinien Filter (25 mm Rundfilter) - 1 Fluoreszenz Bandpass Filter (25 mm Rundfilter) - geeignet für Messungen mit CFP oder Cerulean"

    Apeer onsite advanced - Basic 3D viewing - Connect basic - Manual EDF - Measurement - Panorama - Spectral unmixing - ZEN Data Storage Client - Acquisition Base (time series and multichannel)

    Manufacturer: Zeiss


    Zeiss Axio Zoom.V16 Stereo Microscope

    Das Fluoreszenz-Stereomikroskop Axio Zoom.V16 hat einen 16-fach-Zoom und eine hohe numerischen Apertur von NA 0,25. Es eignet sich daher für die Betrachtung großer Proben und ganzer Modellorganismen im Fluoreszenzkontrast und Auflicht.

    Geeignet für

    • Große Proben und ganze Modellorganismen
    • Fluoreszenzgefärbte und ungefärbte Proben